การพัฒนาระบบประเมินคุณภาพภายนอกโดยใช้การเปรียบเทียบผลระหว่างห้องปฏิบัติการ สำหรับการตรวจวินิจฉัยมาลาเรียด้วย Real-time PCR ของห้องปฏิบัติการอ้างอิงระดับเขต สังกัดกรมควบคุมโรค ในประเทศไทย
Main Article Content
บทคัดย่อ
โรคไข้มาลาเรียยังคงเป็นปัญหาสาธารณสุขที่สำคัญ โดยเฉพาะในประเทศที่มุ่งสู่การกำจัดโรค การตรวจวินิจฉัยด้วยวิธี Real-time polymerase chain reaction (Real-time PCR) เป็นเครื่องมือที่สำคัญ ซึ่งมีความไวและความจำเพาะสูง สามารถตรวจพบการติดเชื้อระดับต่ำและจำแนกชนิดเชื้อมาลาเรียได้อย่างแม่นยำ อย่างไรก็ตาม ประเทศไทยยังไม่มีระบบประเมินคุณภาพภายนอก (External Quality Assessment; EQA) สำหรับการตรวจวินิจฉัยมาลาเรียด้วยวิธีดังกล่าวในเครือข่ายห้องปฏิบัติการอ้างอิงระดับเขต การศึกษานี้มีวัตถุประสงค์เพื่อพัฒนาระบบประเมินคุณภาพภายนอกสำหรับใช้ในการเปรียบเทียบผลระหว่างห้องปฏิบัติการ (Inter-laboratory Comparison; ILC) และประเมินสมรรถนะของห้องปฏิบัติการอ้างอิงระดับเขต สังกัดกรมควบคุมโรค
การศึกษานี้เป็นการวิจัยเชิงพรรณนา ดำเนินการระหว่างเดือนกันยายน พ.ศ. 2565 ถึงเดือนตุลาคม พ.ศ. 2568 ในห้องปฏิบัติการอ้างอิงระดับเขตจำนวน 10 แห่ง สังกัดกรมควบคุมโรค ตัวอย่างทดสอบพัฒนาจากตัวอย่างเลือดผู้ป่วยมาลาเรียที่เหลือจากการตรวจวินิจฉัยในรูปแบบ dried blood spot (DBS) ครอบคลุมเชื้อ Plasmodium falciparum, P. vivax, P. malariae, P. ovale, P. knowlesi และตัวอย่างลบ โดยผ่านการประเมินความเป็นเนื้อเดียวกัน (homogeneity) และความคงตัว (stability) ก่อนนำไปใช้ในการประเมินสมรรถนะห้องปฏิบัติการ ซึ่งผู้เข้ารับการประเมินดำเนินการตรวจวิเคราะห์ด้วยวิธี Real-time PCR ตามวิธีมาตรฐานของแต่ละแห่ง และรายงานผลการตรวจเป็นชนิดเชื้อและค่า cycle threshold (Ct)
ผลการศึกษาพบว่าตัวอย่าง DBS ที่พัฒนาขึ้นมีคุณภาพเหมาะสมสำหรับใช้ในระบบ ILC โดยมีค่าสัมประสิทธิ์ความแปรปรวนของค่า Ct ไม่เกินร้อยละ 5 และมีความแตกต่างของค่า Ct ระหว่างการทดสอบความคงตัวไม่เกิน ±1.0 เมื่อนำไปใช้ในการประเมินสมรรถนะจำนวน 2 รอบ พบว่ารอบที่ 1 ห้องปฏิบัติการทั้ง 10 แห่งได้รับคะแนนร้อยละ 100 ขณะที่รอบที่ 2 ห้องปฏิบัติการ 9 แห่ง ได้รับคะแนนร้อยละ 100 และ 1 แห่ง ได้รับคะแนนร้อยละ 80 จากการรายงานผลคลาดเคลื่อน 1 ตัวอย่าง ส่งผลให้คะแนนเฉลี่ยของเครือข่ายเท่ากับร้อยละ 99 (SD = 3.16) การประเมินค่าความสอดคล้องด้วยสถิติ Fleiss' Kappa ของผลตรวจเท่ากับ 0.976 (p < 0.001) จัดอยู่ในระดับ Almost Perfect Agreement และค่า ΔCt อยู่ในช่วง -0.91 ถึง 0.98 ซึ่งอยู่ในเกณฑ์ยอมรับทั้งหมด การวิเคราะห์ Z-score พบว่าห้องปฏิบัติการส่วนใหญ่อยู่ในเกณฑ์ยอมรับ ( ≤ 2) จากผลการตรวจทั้งหมด 99 ตัวอย่าง พบค่าความไวร้อยละ 100 ค่าความจำเพาะร้อยละ 95.24 ค่าพยากรณ์ผลบวกร้อยละ 98.75 และค่าพยากรณ์ผลลบร้อยละ 100
สรุปได้ว่าระบบ ILC ที่พัฒนาขึ้นสามารถใช้เป็นเครื่องมือประเมินคุณภาพภายนอกสำหรับการตรวจวินิจฉัยมาลาเรียด้วยวิธี Real-time PCR ได้อย่างมีประสิทธิภาพ ช่วยประเมินความถูกต้อง ความสอดคล้อง และความสามารถของห้องปฏิบัติการในการตรวจวิเคราะห์ภายใต้สภาวะการปฏิบัติงานจริง อีกทั้งยังสามารถระบุความคลาดเคลื่อนและสนับสนุนการปรับปรุงคุณภาพอย่างต่อเนื่อง อันจะช่วยเสริมสร้างความเชื่อมั่นของข้อมูลทางห้องปฏิบัติการ สนับสนุนการดำเนินงานตามมาตรฐาน ISO 15189 และการเฝ้าระวังเพื่อการกำจัดโรคไข้มาลาเรียของประเทศไทยอย่างยั่งยืน
Downloads
Article Details

อนุญาตภายใต้เงื่อนไข Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 4.0 International License.
ข้อคิดเห็นและเนื้อหาที่ปรากฏในบทความเป็นความเห็นส่วนบุคคลของผู้แต่งแต่ละท่าน มิได้สะท้อนถึงทัศนะของวารสารหรือหน่วยงาน/สถาบันต้นสังกัด ความถูกต้องและข้อผิดพลาดใด ๆ เป็นความรับผิดชอบของผู้แต่งโดยเฉพาะ
การนำบทความ เนื้อหา ข้อมูล หรือภาพประกอบไปใช้ซ้ำหรือเผยแพร่ในลักษณะอื่น ต้องได้รับอนุญาตเป็นลายลักษณ์อักษรจาก กองโรคติดต่อนำโดยแมลง ก่อนเท่านั้น
เอกสารอ้างอิง
World Health Organization. World malaria report 2024 [Internet]. Geneva: World Health Organization; 2024 [cited 2026 Feb 13]. Available from: https://www.who.int/ publications/i/item/9789240104440
Department of Disease Control, Ministry of Public Health. Thailand malaria elimination strategy 2017–2026 [Internet]. Bangkok: Department of Disease Control; 2017 [cited 2026 Feb 13]. Available from: https://ddc.moph.go.th/dvb/pagecontent.php?page=22&dept=dvb (in Thai)
Wang B, Han SS, Cho C, Han JH, Cheng Y, Lee SK, et al. Comparison of microscopy, nested-PCR, and real-time PCR assays using high-throughput screening of pooled samples for diagnosis of malaria in asymptomatic carriers from areas of endemicity in Myanmar. J Clin Microbiol. 2014;52(6):1838-45. doi: 10.1128/JCM.03615-13.
Deo DA, Herningtyas EH, Intansari US, Perdana TM, Murhandarwati EH, Soesatyo MHNE. Difference between microscopic and PCR examination result for malaria diagnosis and treatment evaluation in Sumba Barat Daya, Indonesia. Trop Med Infect Dis. 2022;7(8):153. doi: 10.3390/tropicalmed7080153.
Mpina M, Stabler TC, Schindler T, Raso J, Deal A, Acuche Pupu L, et al. Diagnostic performance and comparison of ultrasensitive and conventional rapid diagnostic test, thick blood smear and quantitative PCR for detection of low-density Plasmodium falciparum infections during a controlled human malaria infection study in Equatorial Guinea. Malar J. 2022;21(1):99. doi: 10.1186/s12936-022-04103-y.
Lou Y, Shan Z, Chen Q, Kang F. Intra-laboratory and inter-laboratory variations analysis for HbA1c assays in China: using internal quality control and external quality assessment data. J Clin Lab Anal. 2025;39(8). doi: 10.1002/jcla.70036.
International Organization for Standardization. ISO 15189:2022 Medical laboratories—Requirements for quality
and competence [Internet]. Geneva: International Organization for Standardization; 2022 [cited 2026 Feb 24]. Available from: https://www.iacld.com/UpFiles/Documents/2e096ce5-485b-4f22-b7be-e557fb7d06f8.pdf
World Health Organization. Guidelines for malaria molecular testing [Internet]. Geneva: World Health Organization; 2022 [cited 2026 Feb 13]. Available from: https://iris.who.int/server/api/core/bitstreams/06f3d49f-cdce-4a2b-9ad9-a66395f40845/content
Moradian A, Goonatilleke E, Lin TT, Hatten-Beck M, Emrick M, Schepmoes AA, et al. Interlaboratory comparison of antibody-free LC-MS/MS measurements of C-peptide and insulin. Clin Chem. 2024;70(6):855-64. doi: 10.1093/clinchem/hvae034.
International Organization for Standardization. ISO 17043:2023 Conformity assessment—General requirements for proficiency testing [Internet]. Geneva: International Organization for Standardization; 2023 [cited 2026 Mar 8]. Available from: https://cdn.standards.iteh.ai/samples/80864/6038a69dfd204c3eb89f1fe3a6aac556/ISO-IEC-17043-2023.pdf
Thomson RM, Cunningham JA, Gatton MM, Murphy SC, Ade MdlP, Ding XC, et al. WHO malaria nucleic acid amplification test external quality assessment scheme: results of eleven distributions over 6 years. Malar J. 2025;24:94. doi: 10.1186/s12936-025-05282-0.
Cunningham J, Thomson R, Murphy S, Ade MdlP, Ding XC, Incardona S, et al. WHO malaria nucleic acid amplification test external quality assessment scheme: results of distribution programmes one to three. Malar J. 2020;19(1):129. doi: 10.1186/s12936-020-03200-0.
Rougemont M, Van Saanen M, Sahli R, Hinrikson HP, Bille J, Jaton K. Detection of four Plasmodium species in blood from humans by 18S rRNA gene subunit-based and species-specific real-time PCR assays. J Clin Microbiol. 2004;42(12):5636-43. doi: 10.1128/JCM.42.12.5636-5643.2004.
Lee PC, Chong ETJ, Anderios F, Lim YA, Chew CH, Chua KH. Molecular detection of human Plasmodium species in Sabah using PlasmoNex™ multiplex PCR and hydrolysis probe real-time PCR. Malar J. 2015;14:28. doi: 10.1186/s12936-015-0542-5.
Landis JR, Koch GG. The measurement of observer agreement for categorical data. Biometrics. 1977;33(1):159-74. doi: 10.2307/2529310.